MTT 那个红珠子测细胞死活,那会儿总认定像是在跟一个看不见的老古董聊天,毕竟它忒老套了,几十年没如何变过样子。但这套流程实际上挺有道理的,核心就是把活细胞和死细胞分开,出于死细胞那个代谢慢,就不如何吃那个蛋了。具体如何搞,你得按部就班来。先拿细胞吹打住,除掉气泡,这一步要是没做好,后面数据全得废,得保证细胞悬液是均匀的,不然测出来的数值全是乱码。
接着加那包 MTT 试剂,把它和细胞按 1:10 的比例混合,这个比例得看说明书,别乱改,毕竟那是死的规矩。混匀之后,把混合液倒进培养瓶要么孔板(就是那种小方格盒),盖严实,放个 37 度、5% 二氧化碳的水箱里孵育 4 到 8 小时。
这工夫是固定的,不管是不是温度高了要么湿度小了,都得守时,工夫一到,细胞内部的那个蓝色结晶就启动变了。 孵育终止,拿个 PBS 洗掉富余的试剂,这一步不能省,洗不够要么洗多了都会干扰读数。倒进显微镜培养盒要么加个盖子,放在暗箱里,别用强光看,不然光把那些结晶都晒坏了,颜色也变不准。轻轻晃动一下,让那些蓝黑色的沉淀物分布均匀,有些沉淀沉底了,有些浮起来,轻轻摇一摇,把悬浮的那些给搅匀,这样测的时候才不好办看错。举例子吧,比如我们测的是某个肿瘤细胞系的 50 个细胞孔,最终发现镜底有结晶体,悬液里有沉淀,那就别怪数据不准了,得先做抗凝要么稀释,让细胞状态变好。 然后才是最关键的一步,吸液。用 10% 的甘油溶液来吸,这个浓度大约每孔 100 微升,要是孔里全是沉淀,吸的时候得先轻轻吹一下,把沉底的结晶体吸出来,不然吸完数据全得崩。等吸好液后,把孔盖好,在暗箱里再等个 30 分钟,这时候那些结晶得慢慢溶解要么稳定下来。最终一步就是读数,拿个酶标仪,波长跟之前孵育的一样,一般选 570 纳米,在 630 纳米挡一下背景。
这时候机器会自动算个平均值,那个数叫 C=10^-7 MTT 吸光度。
记住,这个值越大,说明细胞越多,活着要么半活的可能就越大。 结局出来后,你得自己脑补一下如何判读。
一般来说,活细胞测出来的 C 值肯定大于死细胞,并且活细胞的 C 值一般比死细胞高出一大截,就连高个一倍,这就好比你考数学,及格线是 60,出色是 85,死细胞可能就是一个 65,活细胞就是 80 以上。
要是活细胞的数据都在 65 以下,那说明实验可能搞砸了,要么细胞没孵育好,要么试剂有难题。
有时候死细胞和活细胞的数据忒接近,这时候你得搞个阴性对照,比如加个 BS 液,看看 BS 液能不能把细胞杀死,要是 BS 液里的 C 值挺低,那说明细胞本身状态一般,数据可信度就高了。 实际上 MTT 这东西,说白了就是个定量的杀手锏,能把细胞数量大约数出来,并且不用显微镜也行。但它也有个缺点,就是只能测活性细胞,死的测不出来,并且有些细胞本身代谢就慢,测出来的数值可能虚高,不忒准。
要是你要做更精细的分析,像活体分析要么基因转染,不如用那种电子显微镜要么流式细胞术,那个更直观。
不过对于常规的药效试验要么细胞增殖,MTT 还是那个老江湖,便宜又快,别看不够精细,但好歹能看出个大约,毕竟实验有时候就得靠这个“板砖”撑着。
有时候看着数据波动,心里也发虚,但总比没有数据强,毕竟科研嘛,得有一手,哪怕这手有点迟钝。最终还得提醒一句,每次做实验前,先把说明书看看,别光凭老经验瞎操作,那好办翻车。