细胞计数方法及公式-细胞计数及计算公式

如何数，还能数得准吗？聊聊细胞计数的坑与招 刚拿到培养皿里长出来的细胞，你心里可能百感交集：是欣喜若狂，还是揪心自己数错了？实际上大量时候，数得忒准反而成了折磨。你总怕自己数漏了几个，要么把死掉的算了进去。
实际上，细胞计数这事儿，没那么玄乎，核心就三点：弄对细胞、选对时机、学会换算。 拿血涂片来看最好办，但也最好办出纰漏。
这时候别急着把一片涂片扫那会儿就完事了，得拿显微镜“找茬”。
起初挑好细胞，像淘金一样把红细胞（那些亮红色的圆球）和杂质（灰尘、气泡、就连穿过的细菌）隔开来。
这一步别看苦，但务必做。
接着看那个绿色的细胞核，它才是活细胞，那个红红绿绿的才是你的猎物。
要是镜下全是红细胞，那可就尴尬了，说明样本涂忒厚要么细胞裂开了。
这时候要犯个低级毛病吗？不能，得把视野转到边缘，要么干脆换个高倍镜去扫。 数的时候，别死脑筋地一个一个点数，那样数下来比数沙粒还慢，还好办眼花。智慧的做法是分组计数，比如四个小方格，每个格子里挑 10 个细胞。算出来的平均值，乘以 4，就是整张涂片的总数。
记住，这个平均值要四舍五入，精确到个位。
要是你数了 120 个，结局就是 120；数了 130 个，结局就是 130。别把 120.5 强行写成 120，也别写成 121，这种舍入误差在细胞计数里是绝对要避免的。 要是你想算出密度呢？比如每毫升含多少个细胞？这时候就要用到换算公式了。公式挺好办：每毫升细胞数 = 视野平均细胞数 × 分母。
这里的分母，看你的涂片多大。
要是是全视野，分母是 1；要是是只数了中间四个小方格，分母就是 4；要是总数是数出来的（比如 120），那分母就不用管了，直接就是 120 要么换算后的数值。
举个例子，你在显微镜下数了 120 个细胞，算回这层培养液里，那你每毫升大约就有 120 个细胞。
要是你的涂片面积挺大，比如数了 4 个方格，那就得乘以 4，结局就是 480 个每毫升。 换算公式的核心思想实际上就一句话：把“局部”换算成“整体”。
你看到的只是切片的一局部，要想知道总体情况，就得把这个局部乘以“倍数”。倍数的大小，取决于你数的是几平方毫米。
这也是为啥有时候数多了，有时候数少了，有时还需求换算的缘由。有些学校要么医院规定，涂片要染成红色，这样红细胞的边缘更清楚，数起来好办，选个好的染色剂是基础。 实际上，细胞计数这事儿也不乏一些小技巧。
比方说，要是镜下密密麻麻全是红细胞，一偏就全是红，那肯定是涂得忒厚了。
这时候你能够略微压一压，要么把视野转到角落去数，这样既省力又能避开干扰。
要是死活一样多如何办？那就挑个绿色的数，绿色的代表活的，红色的代表死的，这样能掐出水准。 最终想说的是，甭管用显微镜数还是用台盼蓝染色法，本质都是要把“活”的东西找出来。
这个“活”，定义有时候挺微妙，有时候就是染了色的细胞能扛得住染料。数的时候，松快点，别忒较真，数得准，结局准；数得慢，数据就不准。
毕竟，数出来的数据要是偏了，后续的实验数据全得重来，多费事啊。
故此，多练习几次，慢慢就能建立起自己的计数节奏。